脉冲场凝胶电泳

1.以TE缓冲液悬浮λ多联体(Boehringer MA宝灵曼公司产品)，浓度为4μg/40μl。

2.用等体积TE配制的2%低熔点琼脂糖(温度保持在45℃)混匀。

3.移去混合液注入预冷的凝胶块模具中。

4.室温下用TE及100 mmol/L NaCl溶液温育2天。

1.从YPD(酵母提取物，蛋白胨和葡萄糖)培养基瓶皿中挑选单一克隆加入10ml

YPD预培养的肉汤中，30℃下剧烈震荡生长24小时，然后加入200ml YPD肉汤，剧烈振荡24~48h(产量大约100块)。

2.4000×g转速，离心10min，然后用50mmol/L EDTA/10 mmol/L Tris-HCl(pH7.5)溶液悬浮。

3.仍以4000×g转速离心10min，再用SCE[1 mol/L 山梨醇，0.1mol/L枸椽酸钠，pH5.8及10 mmol/L

EDTA (pH7.5)]溶液重悬。

4.取稀释后的细胞悬液用Neubauer腔计数。

5.溶液短暂离心后，再用SCE重悬细胞，使40μl SCE溶液中含5×107个细胞(相当于80μl体积的模块中含有5×107个细胞)。

6.溶液与0.1mg/ml酵母扣糖酶100T和100mmol/Lβ-巯基乙醇混匀，37℃保温15~30min。

7.细胞悬液与等体积的SCE配制的2%低熔点琼脂糖凝胶混匀，保持在50℃。

8.将混合物移注入预冷的凝胶块模具中。

9.凝胶块用含10 mmol/L二硫苏糖醇的SCE溶液37℃下振荡温育1~2小时。

10. 将凝胶块移入蛋白酶缓冲液中，加入2mg/ml蛋白酶K，50℃温育48h。

11. 用50 mmol/L EDTA/10 mmol/L Tris-HCl(pH7.5)溶液洗涤凝胶块3次，每次20min。

12. 凝胶块可用此混合液于4℃保存或不用漂洗直接装载入凝胶中。

1.将0.8%的琼脂糖在0.25×TBE中熔化后冷却至50~60℃，立即注入凝胶框架中，并插入梳子。

2.凝胶固化后小心地拔出齿梳，用2把无菌手术刀将DNA凝胶块上样。若用不同内切酶消化凝胶块，则取不同样品时应将手术刀片烧灼后冷却。将DNA大小标志物上样至凝胶的两旁。

3.用1%液态低熔点琼脂糖凝胶(0.25×TBE配制)密封狭槽。

4.若有气泡存在，用注射器驱赶气泡。

5.一旦密封的低熔点琼脂糖已固化(大约10min)，可将凝胶搁入腔室，并用电泳缓冲液覆盖过胶面。

6.应设定合适的电压及转换时间(参考《分子医学技术》84页表8.1)并开始电泳。两个不同电泳方向的电流应相等。

7.电泳结束后，凝胶用0.25×TBE配制成的EB(0.4μg/ml)染色。

8.用泵自槽中排除缓冲液，续以双蒸水冲洗电泳槽。

9.凝胶成像:DNA在曝光的过程中可能会形成缺口。

10. 用0.25mol/L HCl漂洗凝胶30min，让DNA脱嘌呤，并有利于转移。

11. 凝胶用碱(变性溶液中)变性20min，两次，续以中性溶液1~5min。

12. 采用标准Southern印迹方案将DNA转印至尼龙膜上。一般来说，印迹PFGE凝胶的时间较普通凝胶印迹时间长(约48h)。

1.收集10ml全血，加入30ml细胞裂解液。置冰浴中至少20min直至红细胞完全溶解。

2.2000r/min离心10min，移去红色上清液，再次用细胞裂解液洗涤细胞，然后用PBS重悬细胞。

3.稀释单细胞悬液并取一小份用Neubauer腔计数细胞。

4.用PBS重悬细胞，以达到40μl PBS中含1百万个细胞比例(1百万个二倍体哺乳动物大约含有基因组DNA 10μg)

5.用PBS配制2%浓度低熔点琼脂糖溶液并保持在50℃。

6.将等体积(各1ml)细胞悬液与琼脂糖溶液于室温下混匀，立即倒入凝胶块模具中。

7.静置20min让琼脂糖固化，用无菌塑料杯(通常用作划菌)将凝胶块自模具中取出并置入蛋白酶缓冲液中，加入2mg/ml的蛋白酶K。

8.将带有凝胶块的蛋白酶K缓冲液于50℃保持2~3天。每个盛有50ml蛋白酶缓冲液的Falcon管可容纳多达100个凝胶块。

9.蛋白酶K消化后，可将凝胶块保留在此缓冲液或0.5mol/L EDTA溶液中保存于4℃。

10. 此外，继续将凝胶块用高压消毒过的TE缓冲液冲洗数遍的步骤。

11. 将凝胶块放入装有TE及0.04mg/ml PMSF溶液的Falcon试管中，灭活残留的蛋白酶K。

12. 室温下用TE溶液漂洗凝胶块数次，将凝胶块放入另一干净的试管，可直接用于酶切反应或用0.5mol/L

EDTA，(pH8.0)4℃保存凝胶块。

13. 若用EDTA保存凝胶块，取出后应用TE溶液室温下漂洗30 min×2次。

1.应使用消毒溶液及戴无菌手套以免DNA降解。

2.在Falcon试管中用1×TE溶液漂洗凝胶块20min 3次，以去除EDTA。

3.混合:酶反应缓冲液(高、中或低盐缓冲液)，100

mmol/L亚精胺(只用于高盐缓冲液状态)，10~20单位的内切酶。20单位的内切酶就足以过夜完全消化10μg DNA。

4.设立一个除内切酶成分外含有混合物各组分的阴性对照，以检查是否有非特异性DNA降解。

5.将琼脂糖凝胶块加入反应混合溶液中:通常用消毒过的手术刀或套环将凝胶块移入。

6.若两种内切酶所需缓冲液条件一致，可以同时或先后用两种不同的酶进行消化(先用低盐缓冲液的酶消化，再调整盐浓度)。倘若首次消化的酶要求50℃条件，在第二个酶消化时要换缓冲液。

7.若要进行部分消化，则首先在同一温度和反应时间用1:10稀释的酶进行尝试。